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1.はじめに
微量元素の使用の有効性は、現代の家禽の栄養において重要なトピックです。微量ミネラルは、体のほとんどの細胞の触媒または酵素系の構成要素であるため、生体の正常な成長と多くの代謝プロセスに不可欠であるためです (Swigtkiewicz et al. . ., 2014)、骨と卵殻の形成、卵の構造と鳥類胚の発生 (Richards, 1997)、および精液の質 (Barber et al., 2005) を含む。
繁殖鶏の飼料に使用されるほとんどのミネラル源は、酸化物、硫酸塩、炭酸塩、リン酸塩などの無機化合物に由来します。有機微量ミネラル源は、無機源に代わるものです。有機微量ミネラルは、酸性の胃内 pH の培地では解離せず、電子に関して中性を保ち、腸管腔内の他の分子との化学反応から保護されます。その結果、吸収が最適化され、無機源と比較してバイオアベイラビリティが向上します (Swiątkiewicz et al., 2014)。キレート化または複合ミネラルは非金属配位子を持ち、有機物です (Vieira, 2008)。有機化合物は、中央の金属原子 (電子受容体) を含み、非共有電子対を持つ少なくとも 1 つの原子 (O、N、または S) を持つ配位子 (タンパク質、アミノ酸、炭水化物、または脂質) も含みます (Swinkels et al. 、1994）。
最も一般的に供給される有機ミネラルには、亜鉛、マンガン、セレン、銅、鉄が含まれます。亜鉛は、卵殻形成中の炭酸イオンの供給に不可欠な炭酸脱水酵素の成分です (Robinson and King, 1963)。繁殖鳥の食餌における亜鉛欠乏は、卵の孵化能力の低下、胚の死亡率の上昇 (Kienholz et al., 1961)、卵への精子の浸透の低下 (Amen and Al-Daraji, 2011) をもたらします。マンガンは、ムコ多糖類と糖タンパク質の合成に関与し、樹皮の有機マトリックスの形成に寄与する酵素の金属活性化剤です。銅は、卵殻膜に存在する結合間のコラーゲンの形成に重要な酵素であるリシルオキシダーゼの補因子として重要な役割を果たします (Leeson and Summers, 2001)。鉄はヘモグロビンとミオグロビンの構成要素であり、生物の基本的な生理学的プロセスに不可欠な酸化、還元、および電子伝達に関与しています (Andrews, 2002)。セレンは、セレノタンパク質の構成要素である抗酸化システムに作用し、酸化ストレスを軽減するために直接的または間接的に作用します (Moreira et al., 2001)。セレンは、生殖プロセスにおいて最も重要な要素の 1 つです。セレンが不足した食事は、精子の数、運動性、および受精能力の低下をもたらす可能性があります.
亜鉛 (Zn)、銅 (Cu)、鉄 (Fe)、マンガン (Mn)、セレン (Se) などの微量ミネラルは、胚の細胞に含まれる酵素や金属含有タンパク質の触媒補因子または構造補因子として機能し、彼らの胚外膜。これらの化合物は、胚の生存に寄与する要因です。孵化が起こる前の胚の分化組織の発達に特定の微量ミネラルが必要な場合、成長と発達の期間中に利用できるようにするために、必須微量ミネラルごとに特定の食事要件があります (Richards, 1997). 〇
この研究の目的は、産卵鶏の飼料におけるキレート化アミノ酸ミネラル (銅、鉄、マンガン、亜鉛) およびタンパク質金属 (セレン) の補給が、成績、卵の品質、孵卵によって影響を受ける変数および精子の品質に及ぼす影響を評価することでした。無機ミネラルを配合したオンドリ。
2。材料と方法
本研究は、サンタマリア連邦大学 (UFSM) の Aviculture Laboratory-LAVIC で実施されました。 UFSM 倫理委員会は、この研究で使用されるすべての手順を承認しました。合計 144 羽の白いプリマス ロック産卵鶏と、36 ～ 55 週齢の 36 羽のロードス アイランド レッド鶏が使用されました。鶏と雄鶏は、それぞれ0.33×0.45×0.40 mと0.33×0.60×0.60 mの個々のケージに分配されました。鶏は、実験を開始する前に、体重と産卵によって標準化されました。オンドリは、体重と表現型の形質によって標準化されました。実験期間中、ニワトリは週に 1 回人工授精された (精液 0.05 ml; Rosa et al., 1995)。精液は、ニワトリと同じ餌を与えられたロード アイランド レッド オンドリから採取されました。食料と水が提供された 自由に🇧🇷鳥は毎日約 08:00 h に餌を与えられました。ニワトリは、36 から 55 週齢まで 16L:8D の毎日の光サイクルを与えられました。
2.1.トリートメント
実験計画は完全に無作為化された計画であり、3 回の治療、8 回の複製、それぞれ 6 羽のニワトリが使用されました。治療ごとに合計 12 羽の雄鶏を別々のケージに入れ、同じ実験用飼料を与えました。1 羽の雄鶏が複製を表しています。有機微量ミネラル（OMM）の供給源は、アミノ酸でキレート化されたCu、Fe、Mg、およびZnでした。ミネラルは大豆飼料でキレート化され、使用されたアミノ酸マトリックスは非特異的アミノ酸プロファイルを有する大豆飼料でした。 Se は、金属タンパク質の形態のセレンを含む専用の酵母製品 (YesSinergy Agroindustrial Ltda.) から供給されました。無機形態の Cu、Fe、Mg、Zn、および Se は、亜セレン酸ナトリウム (Na) を供給することによって供給されました。2もし3）、硫酸銅（CuSO4）、硫酸鉄（FeSO4）、岩石源からの酸化マンガン（MnO）および酸化亜鉛（ZnO）。繁殖鶏には、35 週齢で大豆とコーン チャウをベースにした基礎食を与えました。 36 週目に、3 つの実験食が鶏と雌鳥に割り当てられました: 無機ミネラル源のみを含む基礎食 (BD) (10 mg の Cu、60 mg の Fe、70 mg の Mn、75 mg の Zn および 0.3 mg の Se)表 1 に示すように、BD は、2.5 mg の Cu、17.5 mg の Fe、20 mg のMn、27.5 mg Zn および 0.08 mg Se/kg 食餌、4 mg Cu、28 mg Fe 、32 mg Mn を含む、食餌 1 トンあたり 800 g OMM が追加された BD (BD +800 g OMM) がありました、食事 1 kg あたり 44 mg の Zn および 0.128 mg の Se が含まれています。すべての成分と無機ミネラルで構成される BD を横型ミキサーで混合し、実験食を別の横型ミキサーで混合し、事前に決定した量の有機ミネラルを追加しました。各食事について、食事に含まれてはならない成分による汚染を避けるために、ブレンダーを洗浄しました。
2.2.雌鶏の成績と卵質
卵を集め、数を 1 日 4 回記録しました。各雌鶏の産卵数を毎週計算した。 1 日あたりの飼料摂取量 (g/雌鶏/日)、飼料換算 (kg 飼料/産卵数 1 ダース、kg 飼料/kg 産卵)、および体重 (BW) を 28 日間隔で計算した。
卵重、卵黄重量、卵白重量、卵殻重量、比重を毎週測定し、実験期間中に合計 20 回の分析を行いました。これらの分析では、各処理グループから合計 24 個の卵 (8 回の複製ごとに 3 個の卵) を使用しました。精密天秤（0.001g）を用いて卵重、卵黄重、卵白重を測定した。と特定された卵は
表1
基礎食の組成と実験食の栄養成分。
| 材料 | DB | BD+500gOMM | BD+800gOMM |
| とうもろこし (g/kg) | 650.22 | 650.22 | 650.22 |
| 大豆飼料 (460 g/kg タンパク質) (g/kg) | 241.73 | 241.73 | 241.73 |
| 大豆油（g/kg） | 1.49 | 1.49 | 1.49 |
| リン酸二カルシウム (180 g/kg P; 210 g/kg Ca) (g/kg) | 10.66 | 10.66 | 10.66 |
| 石灰石 (380 g/kg Ca) (g/kg) | 81.88 | 81.88 | 81.88 |
| 塩分 (g/kg) | 4.00 | 4.00 | 4.00 |
| 無機ビタミンとミネラルのプレミックス1 (g/kg) 有機ミネラル2 | 10.0 | 10.0 | 10.0 |
| キレート銅アミノ酸 (mg/kg) | 🇧🇷 | 2.5 | 4 |
| キレートマンガンアミノ酸 (mg/kg) | 🇧🇷 | 20 | 32 |
| 亜鉛アミノ酸キレート (mg/kg) | 🇧🇷 | 27.5 | 44 |
| キレート鉄アミノ酸 (mg/kg) | 🇧🇷 | 17.5 | 28 |
| セレン酵母 (mg/kg) | 🇧🇷 | 0.08 | 0.128 |
| ヨウ素 (mg/kg)3 計算上の栄養成分 (g/kg) | 🇧🇷 | 0.6 | 0.96 |
| 粗タンパク質 | 17.00 | 17.00 | 17.00 |
| 代謝エネルギー（kcal/kg） | 2768 | 2768 | 2768 |
| カルシウム | 35.0 | 35.0 | 35.0 |
| 利用可能なリン | 3.0 | 3.0 | 3.0 |
| 栄養成分分析（g/kg） | |||
| 粗タンパク質 | 16.58 | 15.49 | 15.60 |
| 総エネルギー（kcal/kg） | 3893 | 3958 | 3884 |
| 灰 | 14.38 | 13.29 | 15.69 |
| カルシウム | 33.5 | 33.4 | 33.3 |
| 全リン (Total P) | 5.1 | 5.1 | 5.1 |
1ミネラルとビタミンのプレミックス: 食事 1 kg あたりのレベル (DSM Nutritional Products Ltd.): ビタミン A 1500 IU。ビタミンD3 4500 IU;ビタミンE 80 IU;ビタミンK3 5mg;ビタミンB1 3.5mg;ビタミンB2 12mg;ビタミンB6 6mg;ビタミン B12 40 mcg;ナイアシン 60 mg;パントテン酸 20 mg;ビオチン 0.4 mg;葉酸3mg;鉄60mg;銅10mg;亜鉛75mg;マンガン 70 mg;アスコルビン酸 0.15 mg;セレン0.3mg;ヨウ素10mg;メチオニン 1.04g;フィターゼ 600 FYT/g;コバルト1mg;エンラマイシン 5 mg;リジン 0.15 g;プロテアーゼ 11250 Prot/kg。
- YesSinergy Brasil (Yes Minerals) 360 – 鳥。
- 無機ヨウ素 (はいミネラル) 360 – 家禽。
無傷の卵は、生理食塩水に卵を浸漬する方法を使用して比重の評価にかけられました。密度が 1070 ～ 1100 g/cm の 7 つのソリューション3、ソリューション間で 0.05 の段階的な変動で準備されました。 Peebles and McDaniel (2004) によって説明されているように、濃度計とアルキメデスの原理を使用して比重を決定しました。比重評価の完了後、実験単位ごとに 3 つの卵のサンプルを使用して、卵白の高さを決定しました。
ミリメートル (mm) 単位の測定値は卵の重量に関連付けられているため、ハウの単位は 100* log (H − 1.7 W0.37 + 7.6) となります。
H = 卵白の高さ (mm)、W = 卵重 (g)。
卵黄の品質は、つぼみの高さ (YH) とつぼみの幅 (YW) を測定することによって評価され、つぼみ指数 (YI) は、これらのパラメーターの比として YI = YH/YW として計算されました。 3 つの卵黄と 3 つの卵白サンプルを別々に混合してから、デジタル卓上型 pH メーターを使用して pH を測定しました。
以前の分析からの卵殻を使用して、殻の厚さと重量を決定しました。ただし、皮の重量と厚さは 28 日ごとに測定されました (実験の全期間中に合計 5 回の分析が行われました)。卵殻を室温で 72 時間乾燥させた後、重量を測定した (RodriguezNavarro et al., 2002)。実験単位ごとに 3 つの卵からの殻を使用して、各卵の赤道帯の 3 点で 0.001 mm の外部電子マイクロメーターで殻の厚さを決定しました (Lin et al., 2004)。卵殻強度は、TA.XT2 テクスチャー アナライザー テクスチャーメーターと 5 mm のステンレス鋼 Cyln プローブ (Texture Technologies Corp. および Stable Micro Systems Ltd.、マサチューセッツ州ハミルトン) を使用して、複製あたり 3 つの追加の卵で測定しました。
2.3.おんどりの成績と精子の質
1 日あたりの飼料摂取量 (g/オス/日) と体重 (BW) は 28 日ごとに計算されました。精液は、背中と腹部のマッサージ法を使用して 2 週間ごとに収集され、37 ° C の水浴に配置された目盛り付きの Falcon チューブに収集された後、射精量、精子の運動性、活力、および精子の pH がチェックされました。精子の運動性は、運動性精子のパーセンテージとして (直線的かつ漸進的に) 決定され、精子の運動性の活力は、運動性の特徴に基づいて決定されました (Celeghini et al., 2001)。この分析では、5 μL の精液を加熱したスライドに沈着させ、光学顕微鏡を使用して 200 倍の倍率で観察しました。新鮮な精液のpH値は、テストストリップ（MColorpHastTM; Merck Millipore、ビレリカ、マサチューセッツ州、米国）を使用して決定されました。精子濃度および形態分析のために、5 μL の精液を 5 ml のホルマリン: クエン酸溶液に添加しました。決定するには
精子濃度、精液を 1:1000 の比率で希釈し、血球計算盤 (Neubauer Chamber) を使用して精子細胞数を測定し、結果を mm あたりの細胞数で表した3 Brillard と McDaniel (1985) によって記述された技術による精液の。結果は、精液 1 ml あたりの細胞数に変換されました。合計 100 個の精子を、位相差顕微鏡 (倍率 1000 倍) を使用した油浸法を使用して評価し、精子を正常または異常な構造 (頭部、中央部、尾部の異常に分類) と、正常または異常の合計パーセンテージに分類しました。精子を計算した。
2.4.インキュベーション変数
孵化率、有精卵の孵化率、受精率、胚死亡率、穴を開けた卵、ひよこの質と体重を評価するために、卵を毎週孵化させました（合計20回の孵化）。目に見える異常のない健康な卵のみを孵卵に使用しました。毎日収集されたすべての卵は、各実験グループの孵化のために分類および分離されました。孵化に適していると考えられる卵は、温度管理された部屋 (18 ～ 20 °C、75% ～ 80% RH (相対湿度)) で最大 7 日間保管されました。インキュベーションは、37.5°C、60% RH の商用多段階インキュベーター (Casp、Amparo、SP、ブラジル) で実行されました。 18 日目に、36.5°C および 65% RH に調整された孵卵装置に卵を移しました。抱卵率は、抱卵した卵の総数に関連して決定されました。受精率は、孵化した卵の有精卵の割合を指し、孵化率は、孵化した有精卵の割合です。ヒヨコをインキュベーターから取り出し、体重を測定し、一次および二次品質のヒヨコに分類した。ひよこは、へその緒、くちばしの異常、下肢の衰弱、羽毛の垂れ下がり、過度に湿った羽毛がある場合、第2の品質と見なされました。受精卵の孵化率、受胎能および胚死亡率を評価すること。
潜伏は起こらなかったが、胚診断に提出された。この評価では、肉眼による目視検査を使用して、卵を不妊または次のように分類しました。潜伏期間の 3 日目と 7 日目の間に発生した胚死亡率 (EM2)、潜伏期間の 8 日目と 14 日目の間に発生した胚死亡率 (EM3)。胚の死亡率は、潜伏期間 (EM4) の 15 日目と 21 日目に発生しました。穴あき卵 – 胚が殻を破り、孵化装置からヒナを取り出した時点で胚が出現していないが、胚がまだ生きている卵。
2.5。実験計画と静的解析
実験計画は完全に無作為化された計画であり、6 羽のニワトリで 8 回の反復を 3 回行った。ニワトリと同じ餌を与え、1 回の治療で 12 羽の雄鶏を使用しました。各オンドリは繰り返しを表しています。すべてのデータは、分散分析にかけられました。 ANOVAを実行する前に、各変数の正規性と分散の不均一性を評価しました。有意差があったとき P < 0.05 Tukey のテストは、処理間の比較に使用されました。統計手順は、SAS Institute (2016) を使用して実行されました。
3. 結果
3.1.雌鶏の成績と卵質
産卵に関するデータを表 2 に示します。産卵は、43、44、45、および 49 週で、BD +800 g OMM 処置群の方が対照 (BD) 群よりも高かった (P = 0.0275, P = 0.0065, P = 0.0112 および P = 0.0285)、他の週には、BD と比較して BD 800 g OMM を与えられた鶏からの産卵率が高くなる傾向がありました。この傾向は、BD + 800 g OMM (79.72%) を与えられた鶏が BD を与えられた鶏 (75.68%) よりも高い平均産卵率を示した全期間平均でも観察されました。 BW と飼料摂取量は、有機微量ミネラルを食事に含めることによって影響を受けませんでした (P > 0.05;データは示していません）。飼料換算 kg/kg (BD、2.59; BD + 500 g OMM、2.45 および BD + 800 g OMM、2.51) および kg/日 (BD、1.86; BD + 500 g OMM、1.74 および BD + 800 g OMM、1.76 ）食事にOMMが含まれているため、影響を受けませんでした
(P > 0.05;データは示していません）。卵の重さ（P = 0.2863)、卵黄重量 (P = 0.9634)、卵白重量 (P = 0.1692)、卵殻重量 (P = 0.3337)、比重 (P = 0.3731)、ハウ単位 (P = 0.9581)、卵黄の pH (P = 0.6171)、卵白の pH (P = 0.6989)、卵殻の厚さ (P = 0.5150) およびシェル強度 (P = 0.7979) は、食事に OMM が含まれているため、影響を受けませんでした (表 3)。卵黄指数は卵の方が高かった（P = 0.0092) BD + 800 g OMM を与えられたニワトリからの卵よりも BD を与えられたニワトリからの卵 (表 3)。
3.2.おんどりの成績と精子の質
有機ミネラルの補給は、オンドリの BW と飼料摂取量に影響を与えませんでした (P > 0.05;データは示していません）。雄鶏の精子の質に関するデータは、表 4 に含まれています。精液の量 (P = 0.1054)、精子の運動性 (P = 0.4608)、精子濃度 (P = 0.7550)、異常精子の総数 (P = 0.4650)、精子頭部の構造異常(P = 0.4650)、精子の中間部分の構造の異常 (P = 0.6421)、精子尾部構造の異常(P = 0.3174) は食事に OMM を含めても影響を受けませんでした。精液のpH値（P = 0.6402) は 7.0 から 8.0 の範囲で、治療間で差はありませんでした。精液の pH に対する有機ミネラル補給の効果はありませんでした。精子の活力が高かった(P = 0.0262) BD + 800 g OMM を与えられたオンドリの場合、BD を与えられたオンドリよりも。
表 2
有機微量ミネラルを含む飼料を与えられた産卵鶏の産卵1.
| 年齢（週） | トリートメント | ||||
| DB | BD+500gOMM | BD+800gOMM | それなし* | P値 | |
| 36 | 75.59±2.17 | 74.13±2.17 | 77.38±2.17 | 6.15 | 0.1370 |
| 37 | 75.00 ± 1.51 | 77.38±1.51 | 75.85±1.61 | 4.28 | 0.5418 |
| 38 | 82.73±1.94 | 83.63±1.94 | 87.50±1.94 | 5.49 | 0.2072 |
| 39 | 82.14±2.26 | 80.35±2.26 | 86.60±2.26 | 6.39 | 0.1565 |
| 40 | 80.19±3.05 | 81.94±3.05 | 83.03±3.05 | 8.65 | 0.8043 |
| 41 | 78.87±2.49 | 80.65±±2.49 | 85.41±±2.49 | 7.06 | 0.1838 |
| 42 | 80.65±3.08 | 83.92±3.08 | 80.65±3.08 | 8.71 | 0.6910 |
| 43 | 76.48 B ± 1.87 | 77.21 ab ± 2.00 | 83.63 a ± 1.87 | 5.30 | 0.0275 |
| 44 | 77.21 B ± 1.64 | 77.67 B ± 1.53 | 84.69 a ± 1.64 | 4.34 | 0.0065 |
| 45 | 71.72 B ± 2.51 | 75.89 ab ± 2.51 | 84.01 a ± 2.69 | 7.12 | 0.0112 |
| 46 | 77.21±2.94 | 77.38±2.75 | 78.57±2.75 | 7.78 | 0.9321 |
| 47 | 74.40±3.35 | 76.48±3.35 | 75.26±3.35 | 9.49 | 0.9077 |
| 48 | 75.59±3.04 | 75.59±3.04 | 82.27±3.04 | 8.62 | 0.2254 |
| 49 | 72.02 B ± 2.47 | 77.97 ab ± 2.47 | 82.14 a ± 2.47 | 6.98 | 0.0285 |
| 50 | 73.47±3.07 | 77.38±2.87 | 76.19±2.87 | 8.12 | 0.6449 |
| 51 | 72.91±1.71 | 74.70±1.71 | 77.97±1.71 | 4.85 | 0.1317 |
| 52 | 72.79±2.58 | 77.67±2.42 | 77.68±2.42 | 6.84 | 0.3104 |
| 53 | 77.21±2.64 | 74.10±2.47 | 73.51±2.47 | 7.01 | 0.5653 |
| 54 | 71.27±2.75 | 73.80±2.75 | 73.80±2.75 | 7.79 | 0.7581 |
| 55 | 66.96±3.15 | 72.91±3.15 | 72.91±3.15 | 8.91 | 0.3245 |
| ミディアム (36 ～ 55 週間) | 75.72±1.53 | 77.53±1.53 | 79.95±1.53 | 4.33 | 0.1976 |
ザ 🇧🇷 B 共通のインデックスを共有しない場合、連続する平均は異なります (P ≤ 0.05)。
1 データは、処理ごとの 8 回の複製 (つまり、コンパートメント) の平均を表します。 *骨材なしで、 n = 8.
表 3
36 ～ 55 週齢の鶏の卵の質に関連する変数の値1.
| 変数 | トリートメント | |||||
| DB | BD+500gOMM | BD+800gOMM | それなし* | P値 | ||
| 卵の重さ (g) | 59.95±0.55 | 59.22±0.59 | 58.67±0.55 | 1.57 | 0.2863 | |
| 卵黄重量 (g) | 16.69±0.16 | 16.72±0.17 | 16.66±0.16 | 0.47 | 0.9634 | |
| 卵白重量 (g) | 38.03±0.40 | 37.24±0.43 | 36.94±0.40 | 1.13 | 0.1692 | |
| 卵殻の重さ (g) | 5.22±0.07 | 5.24±0.07 | 5.10±0.07 | 0.20 | 0.3337 | |
| 比重（g/cm³） | 1083.9±0.52 | 1084.8±0.56 | 1083.7±0.52 | 1.49 | 0.3731 | |
| ハウユニット | 95.01±0.42 | 94.92±0.45 | 94.84±0.42 | 1.19 | 0.9581 | |
| 宝石インデックス | 0.443 a ± 0.00 | 0.441 ab ± 0.00 | 0.436 B ± 0.00 | 0.93 | 0.0092 | |
| 卵黄のpH | 5.92±0.01 | 5.94±0.01 | 5.93±0.01 | 0.03 | 0.6171 | |
| 卵白のpH | 8.34±0.03 | 8.30±0.03 | 8.31±0.03 | 0.09 | 0.6989 | |
| 卵殻の厚さ (mm) | 0.373±3.67 | 0.377±3.93 | 0.371±3.67 | 10.40 | 0.5150 | |
| シェル強度 (N) | 35.79±1.09 | 35.07±1.16 | 34.78±1.09 | 3.08 | 0.7979 |
ザ 🇧🇷 B 共通のインデックスを共有しない場合、連続する平均は異なります (P ≤ 0.05)。
1 データは、1 回の処理につき 8 回の複製 (つまり、コンパートメント) の平均を表します。 *骨材なしで、 n = 8.
3.3.孵卵中の胚および卵の発育に関連する変数への影響
孵化能力（P = 0.3527)、有精卵の孵化能力 (P = 0.0750)、総胚死亡率 (P = 0.7347) EM1 (P = 0.8002)、EM2 (P = 0.3548)、EM3 (P = 0.3548) および EM4 (P = 0.5959) は、食事に OMM を含めても影響を受けませんでした。また、有孔卵の数（P = 0.4929)、第 2 品質のヒナの数 (P = 0.6450) とひよこの体重 (P = 0.2866) は、食事に OMM を含めても影響を受けませんでした。受胎率が高かった（P = 0.0130) BD + 500 g OMM および BD + 800 g OMM を与えられたグループのニワトリの間で、BD を与えられたニワトリの間よりも。 (表 5)。
4。議論
4.1.鶏と卵の質に関連する変数
さまざまなマイクロミネラルサプリメントは、産卵を除いて、パフォーマンスに関連する変数の値に影響しませんでした. 43、44、45、49 週齢の BD よりも BD +800 g OMM を与えた場合の方が産卵量が多く、食事に OMM を補給した他の週では産卵率が高くなる傾向があったという調査結果以前の研究 (Carvalho et al., 2015) からの卵生産の結果と矛盾しています。この以前の研究では、
表 4
実験期間中の鶏の精子の質 (36 ～ 55 週齢)1.
| 変数 | トリートメント | |||||
| DB | BD+500gOMM | BD+800gOMM | それなし* | P値 | ||
| ボリューム (mL) | 1.21±0.08 | 0.96±0.08 | 0.98±0.08 | 0.30 | 0.1054 | |
| 運動性 (%) | 89.30±1.09 | 89.13±1.09 | 90.90±1.09 | 3.79 | 0.4608 | |
| 力2 | 3.91 B ± 0.08 | 4.16 ab ± 0.08 | 4.21 a ± 0.08 | 0.27 | 0.0262 | |
| pH | 7.98±0.02 | 7.98±0.02 | 7.95±0.02 | 0.07 | 0.6402 | |
| 集中3 | 3.89±0.19 | 3.74±0.19 | 3.69±0.19 | 0.67 | 0.7550 | |
| TAS (%) | 4.97±0.51 | 4.24±0.51 | 5.08±0.51 | 1.79 | 0.4650 | |
| ああ (%) | 2.21±0.24 | 1.98±0.24 | 2.38±0.24 | 0.84 | 0.5212 | |
| AIP (%) | 2.35±0.25 | 2.08±0.25 | 2.41±0.25 | 0.89 | 0.6421 | |
| AT (%) | 0.31±0.05 | 0.30±0.05 | 0.21±0.05 | 0.18 | 0.3174 |
ザ 🇧🇷 B 共通のインデックスを共有しない場合、連続する平均は異なります (P ≤ 0.05)。 1 データは、1 回の治療につき 12 回の複製 (つまり、コンパートメント) の平均を表します。 *骨材なしで、 n = 12. 2精子の活力 (スコア 1 ～ 5)。
3 精子濃度（細胞数×109 mLの精液）。
TAS = 精子全体の異常、AH = 頭の異常、AIP = ミッドピースの異常、AT = 尾の異常。
表 5
36 ～ 55 週齢の産卵繁殖雌鶏を用いた実験期間中に評価された繁殖反応 (%)1.
| 変数 | トリートメント | ||||
| DB | BD+500gOMM | BD+800gOMM | それなし* | P値 | |
| インキュベーション能力 | 84.47±1.63 | 85.15±1.63 | 87.72±1.63 | 4.63 | 0.3527 |
| 有精卵の孵化能力 | 92.64±0.92 | 89.94±0.92 | 92.73±0.92 | 2.61 | 0.0750 |
| 受胎能力 | 90.98 B ±1.05 | 95.08 a ±1.05 | 95.54 a ±1.13 | 2.99 | 0.0130 |
| 総胚死亡率 | 5.62±0.81 | 6.53±0.81 | 6.02±0.81 | 2.30 | 0.7347 |
| EM12 | 1.54±0.34 | 1.56±0.34 | 1.83±0.34 | 0.98 | 0.8002 |
| EM23 | 1.06±0.26 | 1.39±0.26 | 0.84±0.26 | 0.75 | 0.3548 |
| EM34 | 1.12±0.22 | 1.24±0.22 | 0.84±0.22 | 0.65 | 0.4723 |
| EM45 | 1.89±0.42 | 2.33±0.42 | 2.49±0.42 | 1,21 | 0.5959 |
| 穴あき | 1.27±0.33 | 1.63±0.33 | 1.06±0.33 | 0.95 | 0.4929 |
| 二次品質のひよこ | 1.60±0.35 | 1.27±0.35 | 1.74±0.35 | 1.01 | 0.6450 |
| ヒナの体重 (g) | 41.46±0.35 | 41.55±0.35 | 40.79±0.35 | 1.00 | 0.2866 |
ザ 🇧🇷 B 共通のインデックスを共有しない場合、連続する平均は異なります (P ≤ 0.05)。
1 データは、処理ごとの 8 回の複製 (つまり、コンパートメント) の平均を表します。 *骨材なし。 n = 8、週あたりのインキュベーション、合計: 20。
2EM1 = インキュベーションの最初の 48 時間における胚死亡。
3EM2 = 孵卵 3 日目から 7 日目の間に胚死亡が発生した。
4EM3 = 胚死亡は、孵卵 8 日目から 14 日目の間に発生した。
5EM4 = 孵卵 15 日目から 21 日目の間に胚死亡が発生。
無機ミネラルの 100%、90%、80%、または 70% の代わりに、有機微量ミネラル (アミノ酸および部分的に加水分解されたタンパク質でキレート化された Cu、Fe、および Mn) の混合物が基礎飼料に含まれたときの産卵鶏の産卵に対する効果。
Kirchgessner と Grassmann (1970) は、有機ミネラルが安定した複合体を形成し、フィチン酸や不溶性繊維などの化合物と塩が沈殿する可能性を減らすことを報告しました。
したがって、有機微量ミネラルは、有機結合成分によってこれらのプロセスが促進され、有機形態であると溶解度と吸収が大きくなるため、生物学的機能により利用しやすくなります。本研究では、有機微量ミネラルの使用により産卵が増加しました。これは、溶解度と吸収の観点から、OMM のこれらの肯定的な特性に関連している可能性があります。パフォーマンスに関連する他の変数は影響を受けませんでした。これは、すべての治療に使用された基礎食が、これらの微量栄養素に対する鶏の要件を満たすようにすでにバランスが取れていたためであることが予想されました.
卵の品質は、OMM の栄養補給によって影響を受けませんでした。この発見は、卵の質の評価が行われた以前の研究 (Stefanello et al., 2014) の結果と一致しています。以前の研究では、47 ～ 62 週齢の産卵鶏に微量ミネラル (Mn、Zn、および Cu) の有機源 (タンパク質) を添加した飼料を与えましたが、卵の比重に影響はありませんでした。また、Saldanha等。 (2009) の効果を評価した
有機ミネラル（Zn、Fe、Mn、Cu、I、Se）の補給。この以前の研究では、産卵鶏 (83 週齢) の卵の質に対するこれらのサプリメントの影響はなく、卵黄と卵白の割合に対する治療の影響もありませんでした.しかし、その以前の研究では、無機ミネラルを置き換えるために80%の有機微量ミネラルが含まれていると、卵の比重と殻の割合に影響がありました.ガルシア等。 (2010) は、アルカリ性 pH が卵黄膜に悪影響を与えることを報告しました。また、Na、K、Mg などのアルブミンのアルカリイオンは、アルブミンから卵黄に輸送されます。アルカリイオンの移動は、
卵黄に存在する水素イオンは、卵黄の pH の上昇につながる可能性があります。この pH の変化は、卵黄中のタンパク質の変性を引き起こし、卵黄の粘度を上昇させる可能性があります。本研究では、雌鶏の飼料に OMM を添加しても卵黄と卵白の pH に影響を与えなかったため、産卵鶏の飼料に OMM を添加しても、この種の問題は発生しないはずです。産卵鶏の生産に使用される繁殖鳥についてはほとんど研究が行われておらず、研究間の結果を比較することは困難です.
個別にまたは一緒に使用された有機鉱物のソースは、ハウ単位 (Saldanha et al., 2009; Yenice et al., 2015) または宝石指数 (Saldanha et al., 2009) の値に影響しませんでした。現在の研究では、ハウ単位の値は、食事に有機ミネラルを加えても影響を受けませんでしたが、卵黄指数は、BD + 800 gのOMMよりもBDを与えられた鳥の方が高かった.卵が劣化するにつれて、卵黄膜の繊維構造が緩み、膜の強度が低下するため、卵黄指数スコアが低くなります (Fromm、1967)。本研究では、BD (無機ミネラルのみ) を与えられた鶏の卵黄指数値は、BD +800 g OMM を与えられた鶏の卵黄指数値よりも大きかった。つまり、芽はより大きな膜繊維構造を示しました。それでも、すべての処理グループの卵黄指数の値は、産卵鶏の卵に適切と考えられる範囲内にとどまり、0.3 から 0.5 の間でした (Yannakopoulos and Tservenigousi, 1986)。
本研究では、課された処理による卵殻の厚さと抵抗に違いはありませんでした。本研究のこれらの調査結果は、Mabe らの調査結果と一致しています。 (2003) では、Zn、Cu、および Mn の栄養補助食品の評価が産卵鶏の間で行われ、卵殻の品質 (殻の割合または殻指数) に影響はありませんでした。その以前の研究では、卵の破壊と破壊の回復力に対してより大きな抵抗がありましたが、これは本研究の発見と矛盾しています. Swiatkiewicz と Koreleski (2008) は、35 ～ 70 週齢の産卵鶏に有機および無機源からの Zn と Mn の添加を評価し、卵殻の割合と厚さに変化がなかったと報告しました。
卵殻の機械的特性に対する観察された影響は、微量元素が殻のテクスチャに影響を与えることにより、炭酸カルシウム形成プロセス中に直接相互作用できることを示しています。微量元素の存在は、シェル形成の初期段階を変化させます (Mabe et al., 2003)。 Bain (1990) は、卵殻の破壊回復力と超微細構造組織との関係を調査し、微量元素の補給が卵殻形成の初期段階での早期融解を促進し、卵の厚さに関係なく卵の機械的強度を向上させることを示唆しました。この効果は、本研究で観察された皮の重量と厚さの点で違いがないことを説明するかもしれません.
4.2.鶏と精子の質への影響
おんどりの精子量は、治療群間で差はありませんでした。シャンら。 (2017) しかし、無機および有機微量ミネラル (Zn、Mn、Cu、Fe、および Se) のプレミックスが 31 週から 35 週で飼育するオスのブロイラーの精液の質に及ぼす影響を評価し、有機ミネラルを与えられた雄鶏の間で、量や密度などの精液に関連する変数の値。有機鉱物 (Cu、Zn、Mn、および Se) は、Mahan らによって提供されました。 （2002）とイノシシの生殖能力を評価するために食事に追加され、結果は、射精による人工授精に使用できる精液の投与回数が10.9回から23.4回に増加したことを示しました.バーバー等。 (2005) 雄鶏の繁殖に関する研究結果に基づいて、微量ミネラル (Se、Mn、および Zn) が精子形成中に生殖組織に機能を発揮し、精液の質を改善することを示唆しました。
スライらによると。 (1998)、Se 補給は雄鶏の精液の抗酸化状態に影響を与えます。 Edens (2002) は、ニワトリに 0.28 ppm の無機 Se を含む基礎飼料を与えた場合、正常な精子の割合はわずか 57.9% であり、2 つの重要な異常である中間部分の湾曲 (18.7%) とコルクスクリュー ヘッド (15.4%) があることを報告しました。しかし、ブロイラーの餌に有機セレンを同量含めると、精液の質はさらに改善され、これらの異常は 0.7% および 0.2% に減少し、正常な精子の割合は 98.7% に増加しました。これらの研究の結果は、家禽の食事にセレンを含めると精子数が増加し、有機源を使用すると欠陥のある精子の割合が減少し、雄の受精能力にプラスの効果があることを示しています.本研究では、精子濃度と精子間の異常は、有機ミネラルと無機ミネラルを与えた場合に同じでした。それにもかかわらず、本研究の結果は、上記の以前の研究の結果と一致しています。これらの変数の値に影響はありませんでしたが、精子の活力は、OMM を含まない BD を与えられた男性よりも BD +800 g OMM を与えられた男性の方が大きかった.さらに、孵卵卵の受精率は、OMM が鶏の食事に含まれていた場合に高かった (この原稿で後述)。
精子細胞の活力の増加は、Renema (2004) によって報告された結果に関連している可能性があります。この以前の研究では、有機セレンを与えられた繁殖鶏は、無機セレンを与えられた鶏と比較して、囲卵膜の受精の時点でより多くの精子穴を持っていました.この効果は、グルタチオンペルオキシダーゼ (GSH-Px) 活性の増加による精子宿主腺のフリーラジカルの減少など、卵管環境の変化に起因していました。
精子の質に関連するその他の微量ミネラルは、Mn、Cu、Zn です。 Mn と Cu は、精子の運動性を強力に刺激します (Lapointe et al., 1996)。 Amen と Al-Daraji (2011) は、亜鉛が細胞分裂と生存可能な精子の生産に重要であり、雄動物の生殖機能にとって最も重要な微量ミネラルであると報告しました。テストステロンの代謝は、精巣の成長、精子の生産、および精子の運動性に必要です。この以前の研究 (Amen and AlDaraji, 2011) では、ブロイラー鶏に対するさまざまな濃度の亜鉛を含む栄養補給の効果の評価が評価され、亜鉛補給がない場合と比較して、精子による卵の浸透が大きくなりました。シャンら。 (2017) は、31 ～ 35 週齢で無機ミネラル プレミックスを与えられた雄鶏よりも、有機微量ミネラル プレミックスを与えられた繁殖用雄鶏のほうが、精子の運動性と正常な精子の数が増加したことを報告しました。本研究では、精子の運動性と異常な精子の数は、有機ミネラルを与えても影響を受けませんでした。オンドリの精子の質に関するさらなる研究を実施して、有機形態のミネラルを使用することの効果を解明することができます.
A.ロンデロ他🇧🇷動物生殖科学 215 (2020) 106309 4.3.インキュベーション中の変数への影響
本研究では、BD を与えられた鶏と比較して、OMM を与えられた繁殖鶏の受精率が高かった。これらの結果は、Rutz らの発見と一致しています。 (2003) では、ブロイラー種鶏の飼料に有機ミネラル (Se-0.2 ppm、Zn- 30 ppm、Mn- 30 ppm) を補給すると、無機形態 (Se-0.3 ppm) を給与した場合と比較して受精率が向上したことが報告されています。 、Zn-100 ppm および Mn-100 ppm)。受精率の増加は、Zn、Mn、Cu、Se などの受精に関与するミネラルの使用量が増加したことに起因する可能性があります。しかし、ヤニス等。 (2015) Mn、Zn、Cu、および Cr (メチオニンにキレート化) の有機および無機混合物による補給の効果を評価し、受精卵および孵化率に関してグループ間に差はなかったと報告しました。
サン等。 (2012) 飼料中の有機ミネラルの補給により、繁殖鶏が脂質過酸化から保護され、卵中の栄養素がより多く保持され、その後のブロイラーの子孫がより大きく成長することが報告されました.現在の研究では、鶏の飼料に OMM を添加しても、胚の死亡率や孵化したヒナの質に影響はありませんでした。第 2 品質のヒナ (不健康なへそ、屠殺され、身体的異常を伴う) およびヒヨコの体重 (高品質のヒナ) は、処理による影響を受けませんでした。
微量ミネラルの Zn、Mn、および Cu は、卵の孵化率だけでなく、胚の発育にも重要な役割を果たしており (Kidd et al., 1992)、卵中の Zn 含有量と卵の孵化能力との間に正の関連性があります。テストステロンの代謝は、正常な精巣の成長、精子の生産、運動性、および精子の数のために発生する必要があり、雄動物の生殖組織のエストロゲンは比較的少ない (Amen and Al-Daraji, 2011)。産卵鶏の飼料に有機セレンを補給すると、受精卵の孵化率が向上し (Hanafy et al., 2009)、受精率と孵化率が向上します (Osman et al., 2010)。この原稿で前述したように、これらの卵の孵化率には影響はありませんでしたが、繁殖鶏の生殖過程におけるミネラルの積極的な役割があり、卵の受精率の増加により本研究で確認されました。
5。結論
結論として、本研究では、Mn、Zn、Fe、Cu、および Se の補給は、成績と卵の品質に関連する主要な変数に影響を与えることなく、繁殖鶏の産卵に使用できます。実験期間を通して、有機微量ミネラルを与えられた鳥の間で卵の生産が増加する傾向にあるというプラスの効果がありました.卵子の受精率は、OMM 給餌でより高くなりました。オンドリの間では、OMM 給餌により、評価された他の精液関連変数の値を変更することなく、精子の活力が増加しました。
融資
この原稿で報告された研究に対して、公共、商業、または非営利部門の資金提供機関からの特定の助成金はありませんでした。
利益相反に関する宣言
私たち、サンタマリア連邦大学の研究者は、動物生殖科学出版物の深刻さと適切な実施を認識しているため、この出版物に利益相反がないことを宣言します.
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